AHK-Cu 100 mg – Haarfolikel-Forschungpeptide (Roller-Format)
AHK-Cu (Kupfertripeptid-3) – Überblick und Struktur
Molekularer Wirkmechanismus (Forschungskontext)
Haarfollikelforschung und Zellmodelle
Haut- und Zellforschungskontext
Vergleichende Forschungsübersicht
| Eigenschaft | AHK-Cu (Kupfertripeptid-3) | GHK-Cu (Kupfertripeptid-1) |
| Sequenz | Ala-His-Lys-Cu²⁺ | Gly-His-Lys-Cu²⁺ |
| CAS-Nummer | 682809-81-0 | 49557-75-7 |
| Molekulargewicht | ~415–451 Da | ~340–404 Da |
| Ursprung | Synthetisches Analogon | Natürlich vorkommendes Peptid |
| Primärer Forschungsschwerpunkt | Haarfollikel-/DPC-Modelle | Breite hautbezogene Signalwege |
| Mechanistischer Schwerpunkt | DPC-Signalübertragung, Signalwegmodulation | Fibroblasten-Signalübertragung, ECM-Signalwege |
| Relevanz für die Haarforschung | Hoch | Mittel |
| Relevanz für die Hautforschung | Sekundär | Primär |
| Forschungskontext | In-vitro-/Ex-vivo-Follikelstudien | Umfassende hautbezogene Modelle |
Forschungsanwendungen und Kontext
Zusammenfassung
Abgabesystem und Format (Forschungskontext)
Dieses Produkt wird als rollenbasiertes Peptid-Abgabesystem präsentiert, das AHK-Cu in einem manuellen Applikatorformat integriert.
Das Gerät verfügt über einen Rollerkopf mit 64 Nadeln, ultrafeinen 0,5 mm goldbesetzten Titannadeln und ein integriertes Reservoirsytem, das die Peptidlösung im Applikator aufnehmen soll.

In experimentellen und kosmetischen Forschungssettings werden Mikronadel-basierte Systeme auf ihre Fähigkeit untersucht, kontrollierte Mikro-Oberflächenkanäle zu erzeugen, die eine lokalisierte Interaktion zwischen Peptidverbindungen und der umgebenden Hautumgebung ermöglichen.
Das Rollerformat ist mit einer gleichmäßigen Verteilung über die Applikationsoberfläche und einem konsistenten Kontakt zwischen der Peptidlösung und den Zielbereichen in kontrollierten Modellen verbunden.
Das Gerät arbeitet mechanisch ohne externe Stromquellen und ist aus Materialien gefertigt, die für Stabilität und Kompatibilität in topischen Forschungsumgebungen ausgewählt wurden.
Goldbesetzte Titankomponenten werden in solchen Systemen häufig aufgrund ihrer strukturellen Eigenschaften und Oberflächeneigenschaften bei wiederholten Kontaktanwendungen verwendet.

Dieses Format wird in der Forschung untersucht, die sich mit lokalisierter Peptidabgabe, Oberflächeninteraktionsdynamik und kontrollierten Verteilungssystemen befasst.
Dieser Abschnitt beschreibt das Abgabeformat und die Präsentation des Produkts im Kontext experimenteller und kosmetischer Forschung.
Produktverwendung
Dieser Artikel wird ausschließlich zu Forschungszwecken geliefert.
Peptidspeicher
Alle von PRG bereitgestellten Informationen dienen ausschließlich Bildungs- und Informationszwecken.
Bewährte Verfahren zur Lagerung von Peptiden
Für die Zuverlässigkeit von Laborergebnissen ist die korrekte Lagerung von Peptiden unerlässlich. Geeignete Lagerbedingungen tragen dazu bei, die Stabilität der Peptide über Jahre hinweg zu erhalten und sie vor Kontamination, Oxidation und Abbau zu schützen. Obwohl manche Peptide empfindlicher sind als andere, verlängert die Einhaltung dieser bewährten Verfahren ihre Haltbarkeit und strukturelle Integrität erheblich.
- Kurzzeitlagerung (Tage bis Monate): Peptide kühl und lichtgeschützt lagern. Temperaturen unter 4 °C sind im Allgemeinen geeignet. Lyophilisierte Peptide bleiben oft mehrere Wochen bei Raumtemperatur stabil, jedoch ist die Lagerung im Kühlschrank vorzuziehen, wenn die Verwendung nicht sofort erfolgt.
- Langzeitlagerung (Monate bis Jahre): Für maximale Stabilität sollten Peptide bei –80 °C (–112 °F) gelagert werden. Vermeiden Sie No-Frost-Gefrierschränke, da Abtauzyklen schädliche Temperaturschwankungen verursachen können.
- Minimieren Sie Gefrier-Auftau-Zyklen: Wiederholtes Einfrieren und Auftauen beschleunigt den Abbau. Teilen Sie die Peptide stattdessen vor dem Einfrieren in Aliquots auf.
Verhinderung von Oxidations- und Feuchtigkeitsschäden
Peptide können durch den Kontakt mit Feuchtigkeit und Luft beeinträchtigt werden – insbesondere unmittelbar nach der Entnahme aus dem Gefrierschrank.
- Um Kondensation zu vermeiden, sollte das Fläschchen vor dem Öffnen auf Raumtemperatur erwärmt werden.
- Behälter sollten möglichst gut verschlossen bleiben und, wenn möglich, unter einem trockenen, inerten Gas wie Stickstoff oder Argon wieder verschlossen werden.
- Aminosäuren wie Cystein (C), Methionin (M) und Tryptophan (W) sind besonders anfällig für Oxidation.
Lagerung von Peptiden in Lösung
Peptide in Lösung haben eine deutlich kürzere Lebensdauer als in lyophilisierter Form und sind anfällig für bakteriellen Abbau.
- Falls eine Lagerung in Lösung unvermeidbar ist, verwenden Sie sterile Pufferlösungen mit einem pH-Wert von 5–6.
- Bereiten Sie Portionen für den Einmalgebrauch vor, um wiederholtes Einfrieren und Auftauen zu vermeiden.
- Die meisten Peptidlösungen sind bei 4 °C (39 °F) bis zu 30 Tage lang stabil, empfindliche Sequenzen sollten jedoch eingefroren bleiben, wenn sie nicht verwendet werden.
Behälter zur Peptidlagerung
Wählen Sie Behälter aus, die sauber, unbeschädigt, chemikalienbeständig und für die Probe geeignet sind.
- Glasfläschchen : bieten Klarheit, Haltbarkeit und chemische Beständigkeit.
- Kunststofffläschchen : Polystyrol (klar, aber weniger widerstandsfähig) oder Polypropylen (durchscheinend, aber chemikalienbeständig).
- In Kunststofffläschchen versandte Peptide können bei Bedarf zur Langzeitlagerung in Glasfläschchen umgefüllt werden.
Regenesis Peptide – Kurztipps zur Lagerung
- Peptide sollten kühl, trocken und dunkel gelagert werden.
- Vermeiden Sie wiederholte Gefrier-Tau-Zyklen.
- Minimieren Sie den Kontakt mit Luft
- Vor Licht schützen
- Vermeiden Sie die langfristige Lagerung in Lösung.
- Aliquotierte Peptide zur Anpassung an experimentelle Bedürfnisse